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Plateau d’ingénierie cellulaire (InCell)

Date de mise à jour : 14 février 2017

Le plateau InCell maîtrise différentes approches d’ingénierie cellulaire appliquées à l’amélioration d’espèces tropicales et méditerranéennes principalement en terme de réponses adaptatives aux contraintes biotiques et abiotiques.

Ce plateau interagit avec quatre équipes scientifiques de l'UMR Agap (Amélioration des plantes à multiplication végétative (APMV)Biologie cellUlaire de la Réponse aux STress abiotiques et biotiques chez les espèces pérennes (BURST) , Diversité, adaptation et amélioration de la vigne (DAAV)  et Développement adaptatif du riz (DAR) ) et accueille  des partenaires des secteurs public et privé. Il propose aux chercheurs l’accès à différents outils et le co-développement de méthodologies adaptées à des objectifs scientifiques. Il maintient une veille technologique facilitant le développement de nouvelles approches permettant de contourner par les biotechnologies les contraintes propres à certaines espèces. Le plateau joue également un rôle important dans la formation à travers des stages d’étudiants dans différents parcours et dans l’accueil de chercheurs et de partenaires français ou étrangers. Par ailleurs, le plateau participe au consortium GENIUS .

Ce  plateau met à disposition un ensemble de méthodologies permettant  d’étudier le comportement adaptatif de plantes d’intérêt agronomique notamment pour la création de matériel végétal original plus adapté aux contraintes  biotiques et abiotiques.  

Savoir-faire, outils et ressources

Développement de technique de multiplication végétative/clonale et de conservation in vitro

  • Embryogenèse somatique
  • Micro-propagation
  • Cryoconservation

Techniques appliquées à la création variétale

  • Sauvetages d’embryons immatures.
  • Hybridation somatique.

 Etude du fonctionnement cellulaire (localisation, séparation et validation)

  • Expression transitoire dans différents systèmes (cellules, protoplastes ou cals).
  • Transformation génétique.
  • Ciblage génique par le système « CRISPR/CAS 9 ».

 Techniques d’étude et de caractérisation cellulaire

  • Cytométrie en flux (CF).
  • Localisation cellulaire/tissulaire in situ par microscopie en fluorescence.
  • Colorimétrie-fluorescence-cinétique enzymatique.
  • Marquage moléculaire Southern blot, northern blot et microsatellites par utilisation de sondes radioactives (isotopes (a et g P32, g P33) et sondes froides.

Equipements et installations

  • 6 chambres climatiques , 2 armoires de culture et 2 enceintes climatiques avec éclairage LED « aralab ».
  • 10 hottes à flux laminaire horizontal, 2 hottes à flux vertical  et une hotte PSM 3 filtres.
  • Station de cryoconservation (Nicool plus cc).
  • Cytomètre en flux (Partec II).
  • Ultracentrifugeuse Beckman Optima XPN-80.
  • Préparateur de milieu MEDIACLAVE-INTEGRA 10.
  • 2 canons à particules (BIORAD et  PIG).
  • Fluorimètre pour microplaques « Fluoroskan® Ascent ».

Date de mise à jour : 14 février 2017

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